说明：DNA有效甲基化试剂；对实验动物能产生糖尿病，建立糖尿病模型。
特性：纯度：≥98% (HPLC),≥75% α-anomer basis
熔点：121℃ (dec.)
保存：-20℃
使用说明：STZ 需要用柠檬酸和柠檬酸钠配制而成的pH4.2 -4.5（Cat：C1013）缓冲液配置。
用途：生化研究。本品为Stre.achromogenes Uar.128产生的亚硝脲类抗生素，它与脂溶性的亚硝脲不同，在氯乙基处是一个甲基，在分子的另一端是一个氨基糖。STZ可自行分解活泼的甲基正碳离子，与DNA呈链间交叉连结，从而使DNA烷化，但其烷化作用比其他亚硝脲类药物弱，而其代谢产物甲基亚硝脲的烷化作用较其STZ强3~4倍。STZ在体内可形成异氰酸盐。从而与核酸蛋白结合，抑制DNA多聚酶活力，使受损的DNA难于修复。在进行抗肿瘤研究过程中发现，STZ可使鼠类的血糖升高，在犬及猴可致糖尿病，且呈永久性。STZ的糖尿病作用具有种属差异性，在豚鼠不引起，在人亦不引起。其致糖尿病机制主要是由于胰岛细胞中菸酰胺腺嘌呤（DNA）含量减少，STZ分子中的葡萄糖基可使STZ进入胰岛β细胞，引起β细胞核内形态变化，使其染色体凝集、伸长和浓缩。

STZ造模注意事项（参考）：
1，本品易潮解失活，应避免其受潮，受潮后30分钟后失效，其水溶液不稳定, STZ要求干燥避光，推荐用干燥铝箔（或锡箔）。

2，配置:柠檬酸缓冲液以1-2％的浓度溶解STZ,冰浴,注射前现配。

3，要求快速注射, 容易形成高血糖，推注的速度慢，危险性较低，但不容易成模. 当然，STZ的剂量是决定血糖高低的主要因素。

4，柠檬酸缓冲液在pH为4.2-4.5时较稳定，偏大或偏小都易造成产品失活。
模型不达标者，三天后可补注STZ（以10mg-20mg/kg体重剂量腹腔注射），也很容易成模，或让血糖恢复正常后再常规剂量注射；但要达到理想的效果，往往是恢复到正常状态下重新造模。
注射剂量（参考）：

Ⅰ型糖尿病模型：大鼠剂量为65-70mg/kg； 或参考产品说明与文献。
Ⅱ型糖尿病模型：高糖高脂喂养1-2个月的大鼠，STZ剂量在25-40mg/kg或参考文献。
常见问题
1、问：STZ粉末收到后，如何保存？

答：多次称取要严格按照避免受潮的原则操作和存放。操作方法：操作环境、盛装容器、分装工具都必须保证干燥。分装后用封口膜密封瓶口，用铝箔纸(或锡箔，即避光)将瓶子包好，放入干燥罐里（干燥剂，即保持干燥状态），并-20℃冷藏，可长期保存。

2、问：STZ溶解可否使用其他缓冲液？

答：可以。但我们推荐使用柠檬酸。例如用醋酸等溶液，也可以做出，但其PH值不好控制，而STZ只有在PH4.2-4.5的时候才具有最佳药力活性。

3、问：STZ注射液配制时，粉末分装需遵循什么原则？

答：①STZ不稳定，易失活，快速称取后剩余试剂仍要求干燥避光，推荐用干燥铝箔(或锡箔)纸包裹。②注射时若操作不熟练，切忌不可一次性溶解完STZ。建议根据操作熟练度，分组溶解STZ，比如10只或15只鼠/组。③亦可提前将STZ按动物分组的所需量称重，分装。

4、问：建模时，常用STZ剂量？

答：以200克鼠均重为例，Ⅰ型糖尿病模型：大鼠剂量为70～65 mg/kg；Ⅱ型糖尿病模型：高糖高脂喂养1～2个月的大鼠，STZ剂量在25～40 mg/kg；或参考文献。本剂量仅做参考。建议通过预实验摸索最佳剂量。

5、问：预实验非常重要吗？

答：很重要。实验时STZ的给药量应参照预实验的结果，尽量不要盲目按照文献上或他人的给药量来直接使用，鼠均重和空腹(低糖状态)抗药力、禁食时长、注射选时、以及之前饲养过程、测糖选时等都不相同，通过预实验来确定符合自己实验鼠的给药计量，才是最科学的。

6、问：建模前，大鼠为何要禁食？

答：禁食12小时以上(一般过夜禁食，不禁水)。禁食的时间越长，STZ对胰岛β细胞的破坏力越明显，即药效越高。所以相对禁食时间延长，可以降低STZ的用量。

7、问：注射方式对实验结果的影响？

答：尾部注射即静脉注射，药物利用率较高，同比腹腔注射，可以节省药量，缺点是操作起来不如腹腔注射方便。

8、问：注射时，推进速度和血糖的关系？

答：推注的速度快，更容易形成高血糖，推注的速度慢，相对的危险性较低，但也不容易成模，常规操作中多要求快速注射。当然，STZ的剂量是决定血糖高低的主要因素。

9、问：注射STZ后，模型不成功，如何处理？

答：模型不达标者，三天后补注STZ（以10 mg-20 mg/kg体重剂量腹腔注射），也很容易成模，或让血糖恢复正常后再常规剂量注射；但要达到理想的效果，往往是恢复到正常状态下重新造模。