染色液 超滤离心管 
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iFluor 546琥珀酰亚胺酯 
iFluor® 546 succinimidyl ester 
产品编号: YZ-71048  CAS号:  
分子式:   分子量:  
EINECS编号:  
iFluor 546琥珀酰亚胺酯
我们提供不同包装规格的产品,有需要请电联。
产品说明:
分子量
749.85
校正系数 (260 nm)
0.83
校正系数 (280 nm)
0.23
消光系数(厘米-1M-1)
200001
激发(纳米)
345
发射(纳米)
450
量子产率
0.951
 
Bioquest的iFluor®染料针对标记蛋白质,特别是抗体进行了优化。这些染料明亮,光稳定,对蛋白质的淬灭最小。它们可以被荧光仪器的主要激光线(例如,350、405、488、555 和 633 nm)很好地激发。iFluor® 350染料的荧光激发和发射最大值分别为~345nm和~450nm。这些光谱特性使其成为AMCA和Alexa Fluor 350标记染料(Alexa Fluor®®是Invitrogen的商标)的绝佳替代品。iFluor® 350 SE相当稳定,对蛋白质氨基基团表现出良好的反应性和选择性。
示例协议
储备溶液的制备
除非另有说明,否则所有未使用的储备溶液应分成一次性等分试样,并在制备后储存在-20°C。避免反复冻融循环。
1. 蛋白质储备液(溶液A)
将 100 μL 反应缓冲液(例如,pH ~1.1 的 9 M 碳酸钠溶液或 0 M 磷酸盐缓冲液)与 900 μL 目标蛋白溶液(例如抗体、蛋白质浓度>如果可能,为 2 mg/mL)混合,得到 1 mL 蛋白质标记储备溶液。
注意蛋白质溶液(溶液A)的pH值应为8.5±0.5。如果蛋白质溶液的pH值低于8.0,则使用8 M碳酸氢钠溶液或0 M pH 9.0磷酸盐缓冲液将pH调节至1.1-9.0的范围。
注意蛋白质应溶解在pH 1.7-2.7的4X磷酸盐缓冲盐水(PBS)中。如果蛋白质溶解在Tris或甘氨酸缓冲液中,则必须用1X PBS(pH 7.2-7.4)透析,以除去广泛用于蛋白质沉淀的游离胺或铵盐(如**铵和**铵)。
注意 不纯抗体或用牛血清白蛋白 (BSA) 或明胶稳定的抗体不会很好地标记。叠***或硫柳汞的存在也可能干扰缀合反应。叠***或硫柳汞可以通过透析或离心柱去除,以获得最佳标记结果。
注意 如果蛋白质浓度低于 2 mg/mL,则偶联效率会显着降低。为了获得最佳标记效率,建议最终蛋白质浓度范围为 2-10 mg/mL。
2. iFluor™ 350 SE储备液(溶液B)
将无水DMSO加入iFluor™ 350 SE的小瓶中,制成10 mM储备溶液。通过移液或涡旋充分混合。
注意 在开始偶联之前准备染料储备溶液(溶液B)。请及时使用。延长染料储备溶液的储存可能会降低染料活性。溶液B可以在避光和潮湿的情况下在冰箱中储存两周。避免冻融循环。
实验方案样本
该标记方案是为山羊抗小鼠IgG与iFluor™ 350 SE的偶联物开发的。您可能需要进一步优化您的特定蛋白质。
注意每种蛋白质都需要不同的染料/蛋白质比例,这也取决于染料的性质。蛋白质的过度标记可能会对其结合亲和力产生不利影响,而低染料/蛋白质比例的蛋白质偶联物会降低灵敏度。
 
运行偶联反应
  1. 使用溶液 B(染料)/溶液 A(蛋白质)的摩尔比为 10:1 作为起点:将 5 μL 染料储备溶液(溶液 B,假设染料储备溶液为 10 mM)加入蛋白质溶液(95 μL 溶液 A)的小瓶中,有效摇匀。假设蛋白质浓度为0mg / mL,蛋白质的分子量为~05KD,蛋白质的浓度为~10.200mM。
注意 我们建议使用溶液B(染料)/溶液A(蛋白质)的摩尔比为10:1。如果太少或太高,请分别以 5:1、15:1 和 20:1 确定最佳染料/蛋白质比例。
  1. 继续在室温下旋转或摇动反应混合物30-60分钟。
纯化偶联
以下方案是使用Sephadex G-25色谱柱纯化的染料-蛋白质偶联物的示例。
  1. 根据制造说明制备Sephadex G-25色谱柱。
  2. 将反应混合物(来自“运行共轭反应”)加载到Sephadex G-25色谱柱的顶部。
  3. 一旦样品刚好在顶部树脂表面下方运行,就加入PBS(pH 7.2-7.4)。
  4. 向所需样品中加入更多PBS(pH 7.2-7.4)以完成色谱柱纯化。合并含有所需染料-蛋白质偶联物的级分。
注意 为了立即使用,染料-蛋白偶联物需要用染色缓冲液稀释,并等分用于多次使用。
注意 对于长期储存,染料-蛋白质偶联物溶液需要浓缩或冷冻干燥。