Blood Genomic DNA Mini Kit
小量血液基因组 DNA 提取试剂盒
(溶液型)
产品内容:
产品成份 |
40012-50 (50 次x0.3ml) |
40012-200 (200 x0.3ml) |
10x 红细胞裂解液 |
5 ml |
20 ml |
细胞核裂解液 |
15 ml |
60 ml |
蛋白沉淀液 |
5 ml |
20 ml |
DNA 溶解液 |
10 ml |
20 ml |
自备试剂:
无水乙醇、异丙醇、70%乙醇
保存条件:
室温(15~25℃)
蛋白酶 K,室温可保存 6 个月,4℃保存 12 个月,~ 20℃保存 2 年。
产品简介:
适用于从新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液样本中快速提取高质量的基因组DNA,也可以提取白膜层和血凝块。
首先红细胞裂解液裂解去除不含DNA的红细胞,细胞核裂解液裂解白细胞释放出基因组DNA, 然后蛋白沉淀液选择性沉淀去除蛋白,最后纯净的基因组DNA通过异丙醇沉淀并重溶解于DNA溶解液。
产品特点:
1. 简便快速:30 min 内可获得高纯度的基因组 DNA。
2. 安全无毒:无需苯酚/氯仿抽提。
3. 高产:典型的产量 300µl 全血可提取出 5~15µg 基因组 DNA。
4. 高纯:OD260/280=1.7~1.9,长度可达 50~150 kb,可直接进行可直接用于构建文库、PCR、、酶切、Southern-blot 等分子生物学实验。
注意事项:
1. 本试剂盒可运用于多种抗凝剂的全血,如 EDTA、柠檬酸、肝素抗凝血。其中由于肝素抗凝血的白细胞沉淀团很难打散重悬,影响裂解效果,建议选用非肝素的抗凝剂收集血液标本。
2. {C}为了最佳效果,最好使用新鲜血液标本或者4℃存放少于3天的标本,不要使用反复冻融超过3次的标本,否则会严重降低产量。
3. 不同样品尤其疾病样品中白细胞数量差异可能非常大,血液DNA产量的个体差异也可能非常大。
4. 如果结合液CB、抑制物去除液IR有沉淀析出,可在37℃水浴溶解,摇匀后使用。
5. 本试剂盒为溶液型,可以很容易的按照比例扩大或者缩小每次处理的全血量(20µl-10ml),请联系我们索取其它处理量的操作手册。
6.DNA溶解液是TE缓冲液洗脱(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,pH 8.0),长期保存DNA,但是EDTA可能下游酶切反应,使用时可以适当稀释。也可以使用水洗脱,但应该确保批pH大于7.5, pH过低影响洗脱效率。用水洗脱DNA应该保存在-20℃。
操作步骤:
使用前,请先用去离子水将 10x 红细胞裂解液稀释 10 倍到 1x。
1. 吸取 900 μl 1x 红细胞裂解液到一个 1.5 ml 离心管。
2. 将抗凝全血(使用前恢复至室温)颠倒混匀后,吸取 300 μl 加到上一步
装有红细胞裂解液的离心管中,颠倒 6-8 次,并倒置轻弹管壁,确保充分混匀。
3. 室温放置 10 min(期间应该颠倒轻弹,混匀数次帮助裂解红细胞)。
4. 12,000 rpm 离心 20 sec,倒弃红色上清,并小心的尽可能多的吸弃上清,留下完整的管底白细胞团和大约 10 μl 的残留上清。
注意:离心后在管底应该见到白色的白细胞团,也可能有一些红细胞残片和白细胞团在一起,但是如果看到的是大部分的红色细胞团,说明红细胞裂解很不充分,应该再加入 900 μl 红细胞裂解液重悬细胞团后重复步骤 3,4。
5. 涡旋振荡直到白细胞团充分重悬、分散。
注意:白细胞的重悬分散对下一步裂解非常重要,白细胞未打散就加入细胞核裂解液,会导致白细胞不能充分裂解,形成肉眼可见团块。
6. 加入 300 μl 细胞核裂解液到重悬的白细胞,上下吹打裂解白细胞,或者剧烈涡旋 10 sec 帮助裂解白细胞。
7. (可选步骤,一般不需要) 在裂解物中加入 RNase A(10mg/ml)至终浓度 30 μg/ml,颠倒 25 次混匀,37℃温育 15 min 去除残留 RNA,然后冷却回室温。
8. 加入 100 μl 蛋白沉淀液后,涡旋振荡 25 sec, 充分混匀,可能见到一些小的蛋白团块。
9. 13,000 rpm 离心 5 min。这时候应该可以见到管底暗褐色的蛋白沉淀,
也可能见到一些蛋白沉淀漂浮在液体表面。
10. 小心吸取上清(大约 300 μl)到一个新的 1.5 ml 离心管中。
注意:吸取上清时,注意不要吸到管底和漂浮在液体表面的蛋白沉淀。如果不小心将蛋白沉淀转入新的离心管中,可再次离心 2 min 后取上清。
11. 加入等体积的室温异丙醇(300 μl),轻柔颠倒 30 次混匀或者直到出现棉絮状(丝状)白色 DNA 沉淀。
12. 12,000 rpm 离心 1 min,在管底可以见到白色 DNA 沉淀块,倒弃上清。
13. 加入1ml 70%乙醇,颠倒几次漂洗DNA 沉淀,12,000 rpm 离心1 min,倒去上清(注意不要把 DNA 沉淀倒掉了),倒置后在吸水纸上轻敲几下以控干残留乙醇,还可以用枪头小心吸掉管底沉淀周围和管壁的残留乙醇,空气晾干沉淀几分钟。
注意:不要干燥过头,否则 DNA 极其难溶;也不能残留太多乙醇,否则乙醇可能抑制下游如酶切反应。
14. 加入 100μl DNA 溶解液重新溶解DNA 沉淀,轻弹管壁混匀,可以放置在 65℃温育 30-60 min(不要超过一小时),期间不时的轻弹管壁帮助重新水化 DNA。也可以在室温或者 4℃放置过夜来重新水化 DNA。
15. DNA 可以存放在 2-8℃,如果要长时间存放,可以放置在-20℃。
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