FlashPure Universal Genomic DNA Kit
血液/细胞/组织/鼠尾/细菌基因组 DNA 提取试剂盒
(离心柱型)
目录号:40110
产品内容:
产品成份 |
40110-50 (50 次) |
40110-100 (100 次) |
平衡液 |
5 ml |
10ml |
裂解液 TL |
11 ml |
20ml |
结合液 CB |
11 ml |
20ml |
抑制物去除液IR |
25 ml |
50ml |
漂洗液WB |
13 ml |
25ml |
洗脱缓冲液 EB |
10 ml |
15ml |
蛋白酶 K 溶液 |
1 ml |
2x 1ml |
DNA 吸附柱和收集管 |
50 套 |
100套 |
1x PBS(赠送) |
10 ml |
20ml |
自备试剂:
无水乙醇,RNase A(可选),溶菌酶(用于革兰氏阳性菌,可选)
保存条件:
室温(15~25℃)
蛋白酶 K,室温可保存 6 个月,4℃保存 12 个月,~ 20℃保存 2 年。
产品简介:
适用于从血液、培养细胞、动物组织、植物组织、鼠尾、细菌等样本中快速提取高质量的基因组DNA。
本试剂盒采用独特的裂解液,利用硅胶膜特异吸附DNA,无需酚氯仿等有毒试剂,也无需进行耗时的醇类沉淀,最大限度的去除蛋白及其他抑制性杂质,得到基因组DNA,无蛋白、核酸酶污染,可直接进行PCR、酶和
杂交等相关分子生物学实验。
产品特点:
1. 简便快速:30 min 内可获得高纯度的基因组 DNA。
2. 安全无毒:无需苯酚/氯仿抽提。
3. 高产:典型的产量 200µl 全血可提取出 3~6µg 基因组 DNA,
4. 高纯:OD260/280=1.7~1.9,长度可达 30~50 kb,可直接进行 PCR、酶切和杂交等分子生物学实验。
注意事项:
1. 如果裂解液TL、结合液CB、抑制物去除液IR有沉淀析出,可在37℃水浴溶解,摇匀后使用。
2. 开始实验前将需要的水浴先预热到70℃备用。
3. 为了最佳效果,最好使用新鲜血液标本或者4℃存放少于3天的标本,不要使用反复冻融超过3次的标本,否则会严重降低产量,不同样品尤其疾病样品中白细胞数量差异可能非常大,因此产量的个体差异也可能非常大。
操作步骤:
第一次使用前,请先在漂洗液 WB 中加入指定量无水乙醇,详见瓶身的标签。提示:所有离心步骤必须在室温(15~25℃)下进行。
1. 柱平衡:向吸附柱的膜中央(吸附柱放入收集管中)加入 100μl 平衡液,12,000 rpm 离心 1 min,弃滤液,将吸附柱重新放回收集管中。
(请使用当天处理过的柱子)
2. 材料处理:
a. 血液
取 200 μl 新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液,放入 1.5 ml 离心管。
▲如果全血起始量小于200 μl,则用1× PBS补足到200 μl。
如果起始量介于300 μl~1 ml之间,则需要先进行红细胞裂解操作: 在样品中加入3倍体积红细胞裂解液颠倒混匀,室温放置10 min,期间再颠倒混匀几次。13,000 rpm离心20 sec(对于1.5 ml离心管)或2,000 ~ 3,000
rpm离心5 min(对于15 ml离心管),吸去上清,留
下白细胞沉淀(如果看到的是大部分的红色细胞团,则再次重复上述红细胞裂解步骤),加入 200 μl 1× PBS,振荡至彻底悬浮。
▲如果处理血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的抗凝血液,其红细胞为有核细胞,因此处理量仅用5 ~ 20 μl,可加1× PBS 补足到200 μl后,进行下面的裂解步骤。
b. 培养细胞
① 105 ~ 106 悬浮细胞到一个 1.5 ml 离心管;对于贴壁细胞,应该先用胰蛋白酶消化后吹打下来收集。
② 13, 000 rpm 离心 10 sec,吸弃上清,留下细胞团。
③ 加入 200 μl 1× PBS 重悬洗涤细胞,13, 000 rpm 离心 10 sec,完全吸弃上清。
④ 再次加入 180 μl 1× PBS,振荡混匀,使细胞彻底悬浮。
c. 动物组织、植物组织(例如鼠肝脑或者植物叶片)
将 20 ~ 50 mg(脾组织用量应少 10 mg)新鲜或者解冻的组织用解剖刀切成小碎块(切成小块可以提高产量)或者在液氮中研磨组织成细粉后,转入装有 180 μl 组织裂解液 TL 的 1.5 ml 离心管中,用大口径枪头吹打混匀。
d. 鼠尾
将 0.2 ~ 0.5 cm 的鼠尾巴尖(即 20 ~ 50 mg)剪碎(一定要剪 0 ~ 2cm范围内的尾巴尖,否则裂解效果不好),或者在液氮中研磨成细粉后,转入装有 180 μl 裂解液 TL 的 1.5 ml 离心管中,用大口径枪头吹打混匀。
e. 细菌
① 取 0.5 ~ 2 ml 培养菌液(最多不超过 2×109 个细胞),10, 000 rpm,
离心 30 sec,尽可能的吸弃上清,收集菌体。
▲起始处理量可以根据细菌密度、细胞种类、预期产量进行调整,但是离心吸附柱最大吸附能力是 30 μg 基因组 DNA,如果菌体过量超过最大吸附能力,反而会严重降低产量。
② 加入 200 μl 1× PBS 重悬,10, 000 rpm 离心 30 sec,吸弃上清。
将细胞振荡或者吹打充分重悬于 180 μl 1× PBS 中。
▲注意:对于较难破壁的革兰氏阳性菌,可略过 b 步骤,加入溶菌酶进行破壁处理,具体方法为:加入 180 μl 缓冲液(20 mM Tris, pH 8.0; 2 mM Na2-EDTA;1.2% Triton X~100;临用前加入终浓度为 20 mg/ ml
的溶菌酶(溶菌酶必须用溶菌酶干粉溶解在缓冲液
中进行配制,否则会导致溶菌酶无活性)),37℃处理 30 min 以上。
3. 加入 20 μl 蛋白酶K 溶液,充分混匀。
a. 提取血液基因组时,只需加入 Proteinase K 混匀,即可进行下一步。
b. 提取细胞基因组时,只需加入 Proteinase K 混匀,即可进行下一步。
c. 提取动物组织、植物组织的基因组时,加入 Proteinase K 混匀后,在 56℃放置 1~3 小时,每小时颠倒混合样品 2~3 次,直至组织完全消化溶解,再进行下一步。
d. 提取鼠尾基因组时,加入 Proteinase K 混匀后,在 56℃放置 3 小时(也可以过夜消化),每小时颠倒混合样品 2~3 次,直至组织完全消化溶解,再进行下一步。
e. 提取细菌基因组时,只需加入 Proteinase K 混匀,即可进行下一步。
4. (可选步骤)加入 5 μl RNase A (100mg/ml) 溶液,振荡混匀,室温放置 5 ~ 10min。
5. 加入200 μl 结合液CB,充分振荡混匀,70℃水浴或金属浴处理10 min。
6. 冷却后加 100 μl 无水乙醇 (或异丙醇),充分振荡混匀,此时可能会出现絮状沉淀,短暂离心以去除管盖内壁水珠。
7. 将所得溶液和絮状沉淀加入一个DNA 吸附柱中,(吸附柱放入收集管中)13, 000 rpm 离心 1 min,DNA 被吸附在膜上,倒弃滤液。
8. 加入 500 μl 抑制物去除液 IR,13, 000 rpm 离心 30 sec,倒弃滤液。
9. 加入 600 μl 漂洗液 WB(请检查是否已加入无水乙醇),13, 000 rpm离心 30 sec,倒弃滤液。
10. 重复步骤 9 一遍。
11. 将 DNA 吸附柱放回空收集管中,13, 000 rpm 离心 2 min,尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
12. 取出 DNA 吸附柱,放入一个干净的 1.5 ml 离心管中,向吸附膜的中央加入 100 μl 洗脱缓冲液 EB (洗脱缓冲液事先在 80 ~ 100℃水浴中预热可以提高产量), 室温放置 3 ~ 5 min,13, 000 rpm 离心 1 min。
▲可将第一次洗脱所得溶液重新加入离心柱中,室温放置 2 min,13, 000 rpm 离心 1 min。可以提高浓度 10%左右。
13. DNA 可以存放在~ 20℃,如果要长时间存放,可以放置在~70℃。
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